肺部液體霧化給藥器是上海玉研儀器專門為小鼠、大鼠、豚鼠等小動物研發設計，可精確對氣管內進行霧化給藥的裝置。可將定量液體通過集成在不銹鋼毛細插管中的氣溶膠霧化微噴頭霧化，毛細插管可深入動物至支氣管分叉處，實現氣管內定量霧化成氣溶膠給藥。相較于傳統口服或注射給藥，藥物可直接作用于肺部，適用于肺部生理、病理、藥理學研究。

優勢特點：

1.適用于小鼠、大鼠、豚鼠、兔子等小動物，也可定制大動物款
2.氣管內直接給藥，無首關消除，藥物全身效應小
3.微量精確給藥，藥物用量可達25μL（液體）
4.可用于溶液、小細胞懸浮液、均質懸濁液、粘度較低的乳濁液等給藥
5.90%藥物霧化直徑≤30μm（液體），可達終末細支氣管甚至呼吸性細支氣管，可均勻分布于大小鼠肺部組織中
6.使用方便，安全穩定，采用不銹鋼材質，堅固穩定耐腐蝕
7.具有至少30篇高影響因子SCI文獻發表，可提供至少1篇IF大于35分的SCI文獻
8.設備具有CE認證證書或EC符合性證書
9.可用于吸入毒理學、空氣生物學、生物危害測試、吸入免疫、吸入治*、藥物研究、環境評價、危害評估和醫學防護等多領域

應用領域：

1. 研究肺部吸收機制：通過給予標記的藥物,可以觀察藥物在肺泡和肺間質中的吸收和轉運過程，也可以準確測定藥物在肺泡、肺間質等不同部位的吸收速率和吸收程度，從而建立可靠的藥物吸收模型。

2. 分析肺部代謝過程 :使用肺部給藥技術,可以檢測給藥后藥物在肺內代謝產物的形成和變化，幫助分析肺部代謝酶的活性和代謝途徑，也可以分析藥物在肺內的代謝動力學，包括代謝速率、代謝產物的形成和清理。

3. 評估肺部清理機制：肺部給藥可作用于肺部，研究肺泡巨噬細胞、肺表面活性物質、纖毛運動等對藥物清理的影響。

4. 探索肺部免疫反應和屏障功能：通過肺部給予免疫刺激藥物，可以觀察肺部免疫細胞的激*和炎癥反應。使用標記的粒子或大分子作為探針，可以評估肺血管內皮、上皮等屏障結構對物質通透性的調控作用。

5.建立肺部-全身循環的藥動學模型：通過肺部給藥數據，可以建立詳細的肺部-血漿-全身循環的藥動學模型，更準確地預測藥物在體內的吸收、分布、代謝和清理過程。

氣管內給藥示意圖

肺纖維化大小鼠模型

傳統經典的復制肺纖維化大小鼠模型方法是通過氣管內滴入博萊霉素溶液，其主要方式有兩種：有創氣管切開滴注以及無創經口氣管滴注。有創氣管切開滴注會對實驗動物造成外源性損傷，增加了實驗動物失血過多和感*的風險，無創經口氣管滴注可引起明顯的肺組織損傷與肺纖維化改變，但溶液呈液滴狀進入肺內，其液滴相對較大，藥物較集中，容易造成動物窒息死亡。

無創經口氣管內霧化給藥則是一種更新、更有效的促進藥物肺內均勻分布的方法，可以將博萊霉素溶液分散為體積更小的液滴，在氣流的推動下，分散的液滴能進入各肺葉，并可到達外周肺組織，因此造成累及各肺葉、出現程度相近的纖維化改變、范圍更彌散的肺組織損傷，更接近人類肺纖維化改變。氣管內霧化博萊霉素溶液對小鼠的創傷小，很少出現窒息的情況，且不需穿刺氣管，減少了動物的損傷與痛苦，降低了實驗鼠的死亡率，并且藥物劑量可以準確控制，實驗結果重復性好，可作為復制肺纖維化大小鼠模型的良好方案。

由于大小鼠肺部疾病模型造模指向性強，需要直接將造模藥物均勻輸送到肺組織中。因此包括**模型，肺纖維化模型，急性肺組織損傷模型，病毒感*模型等肺部疾病模型均可使用經口氣管內霧化給藥造模。

相關產品推薦：

合適的工具能幫助您更好地完成工作，氣管插管臺和小動物喉鏡是幫助您完成肺部給藥手術的得力助手，推薦與肺部干粉霧化給藥器配合使用。

氣管插管平臺

氣管插管平臺支持小鼠、大鼠等小動物在一個穩定舒適的方位開展氣管插管、藥物灌注及其它類似實驗操作。可以根據需要進行不同孔位的固定，進行多種操作角度的調節，滿足不同實驗類型以及實驗動物種類的需求。雙面操作模式，使得肺部給藥操作更為流暢順利，可與我公司小動物呼吸機、麻醉機、肺部定量給藥器、喉鏡等配合使用，也可根據要求進行定制。

CG-02系列

CG-04系列   

CG-06系列

小動物喉鏡

SR310型小動物喉鏡，用于觀察實驗動物的喉部等結構，以進行肺部給藥、經口氣管插管等操作，適用于小鼠、大鼠、豚鼠，也可根據您的要求進行定制。采用光纖LED照明系統，提供清晰明亮的光線，給觀察喉部、會厭等結構的操作人員提供了更好的視野。前端為不銹鋼的葉型尖部，可隨時拆卸或更換。操作柄的形狀符合人體工程學，使操作更舒適方便。

產品特點：

1.外殼采用金屬材質，堅固耐用，易清洗                    

2.操作柄的形狀符合人體工程學的原理，手握舒適 

3.專為大小鼠口腔結構設計的特制葉片，解決了因口腔太小難以插管的難題 

4.具有大鼠葉片和小鼠葉片供選擇 

5.葉片采用不銹鋼材質，很大限度地減少腐蝕，確保耐用 

6.電池采用兩節5號電池，方便更換

參考文獻：

1.Zhu, Chuanda, et al. "An elastase nanocomplex with metal cofactors for enhancement of target protein cleavage activity and synergistic antitumor effect." Chemical Engineering Journal (2024): 149902.doi:10.1016/j.cej.2024.149902.
2.Zhu, Chuanda, et al. "An elastase nanocomplex with metal cofactors for enhancement of target protein cleavage activity and synergistic antitumor effect." Chemical Engineering Journal (2024): 149902，doi:10.1016/j.cej.2024.149902
3.Sun, Xiaolin et al. “GSTP alleviates acute lung injury by S-glutathionylation of KEAP1 and subsequent activation of NRF2 pathway.” Redox biology vol. 71 (2024): 103116. doi:10.1016/j.redox.2024.103116
4.Han, Meng-Meng et al. “Inhaled nanoparticles for treating idiopathic pulmonary fibrosis by inhibiting honeycomb cyst and alveoli interstitium remodeling.” Journal of controlled release : official journal of the Controlled Release Society vol. 366 (2024): 732-745. doi:10.1016/j.jconrel.2024.01.032
5.Feng, Xin et al. “First magnetic particle imaging to assess pulmonary vascular leakage in vivo in the acutely injured and fibrotic lung.” Bioengineering & translational medicine vol. 9,2 e10626. 29 Nov. 2023, doi:10.1002/btm2.10626
6.Fan, Weiyang et al. “Naringenin regulates cigarette smoke extract-induced extracellular vesicles from alveolar macrophage to attenuate the mouse lung epithelial ferroptosis through activating EV miR-23a-3p/ACSL4 axis.” Phytomedicine : international journal of phytotherapy and phytopharmacology vol. 124 (2024): 155256. doi:10.1016/j.phymed.2023.155256
7.Li, Cheng et al. “Broad neutralization of SARS-CoV-2 variants by an inhalable bispecific single-domain antibody.” Cell vol. 185,8 (2022): 1389-1401.e18. doi:10.1016/j.cell.2022.03.009
8.Liu, Chang et al. “An Inhalable Hybrid Biomimetic Nanoplatform for Sequential Drug Release and Remodeling Lung Immune Homeostasis in Acute Lung Injury Treatment.” ACS nano vol. 17,12 (2023): 11626-11644. doi:10.1021/acsnano.3c02075
9.Peng, Boya et al. “Robust delivery of RIG-I agonists using extracellular vesicles for anti-cancer immunotherapy.” Journal of extracellular vesicles vol. 11,4 (2022): e12187. doi:10.1002/jev2.12187
10.Yang, Guang, et al. "Noncovalent co-assembly of aminoglycoside antibiotics@ tannic acid nanoparticles for off-the-shelf treatment of pulmonary and cutaneous infections." Chemical Engineering Journal 474 (2023): 145703.do:10.1016/j.cej.2023.145703.
11.Santin, Yohan et al. “Inhalation of acidic nanoparticles prevents doxorubicin cardiotoxicity through improvement of lysosomal function.” Theranostics vol. 13,15 5435-5451. 2 Oct. 2023, doi:10.7150/thno.86310
12.Sun, Han et al. “Application of Lung-Targeted Lipid Nanoparticle-delivered mRNA of soluble PD-L1 via SORT Technology in Acute Respiratory Distress Syndrome.” Theranostics vol. 13,14 4974-4992. 4 Sep. 2023, doi:10.7150/thno.86466
13.Yue, Dayong et al. “Diesel exhaust PM2.5 greatly deteriorates fibrosis process in pre-existing pulmonary fibrosis via ferroptosis.” Environment international vol. 171 (2023): 107706. doi:10.1016/j.envint.2022.107706
14.Zhang, Mengjun et al. “Airway epithelial cell-specific delivery of lipid nanoparticles loading siRNA for asthma treatment.” Journal of controlled release : official journal of the Controlled Release Society vol. 352 (2022): 422-437. doi:10.1016/j.jconrel.2022.10.020
15.Gu, Peiyu et al. “Protective function of interleukin-22 in pulmonary fibrosis.” Clinical and translational medicine vol. 11,8 (2021): e509. doi:10.1002/ctm2.509
16.Wu, Lan et al. “Poly(lactide-co-glycolide) Nanoparticles Mediate Sustained Gene Silencing and Improved Biocompatibility of siRNA Delivery Systems in Mouse Lungs after Pulmonary Administration.” ACS applied materials & interfaces vol. 13,3 (2021): 3722-3737. doi:10.1021/acsami.0c21259
17.Tian, Xidong et al. “Pulmonary Delivery of Reactive Oxygen Species/Glutathione-Responsive Paclitaxel Dimeric Nanoparticles Improved Therapeutic Indices against Metastatic Lung Cancer.” ACS applied materials & interfaces vol. 13,48 (2021): 56858-56872. doi:10.1021/acsami.1c16351
18.Lin, Wei-Ting et al. “Modulation of experimental acute lung injury by exosomal miR-7704 from mesenchymal stromal cells acts through M2 macrophage polarization.” Molecular therapy. Nucleic acids vol. 35,1 102102. 14 Dec. 2023, doi:10.1016/j.omtn.2023.102102
19.Yang, Huilin et al. “Triptolide dose-dependently improves LPS-induced alveolar hypercoagulation and fibrinolysis inhibition through NF-κB inactivation in ARDS mice.” Biomedicine & pharmacotherapy = Biomedecine & pharmacotherapie vol. 139 (2021): 111569. doi:10.1016/j.biopha.2021.111569
20.Feng, Xin et al. “First magnetic particle imaging to assess pulmonary vascular leakage in vivo in the acutely injured and fibrotic lung.” Bioengineering & translational medicine vol. 9,2 e10626. 29 Nov. 2023, doi:10.1002/btm2.10626
21.Xiao, Xue et al. “SerpinB1 is required for Rev-erbα-mediated protection against acute lung injury induced by lipopolysaccharide-in mice.” British journal of pharmacology vol. 180,24 (2023): 3234-3253. doi:10.1111/bph.16175
22.Su, Ruonan et al. “Venetoclax nanomedicine alleviates acute lung injury via increasing neutrophil apoptosis.” Biomaterials science vol. 9,13 (2021): 4746-4754. doi:10.1039/d1bm00481f
23.Xu, Yingying et al. “PEGylated pH-responsive peptide-mRNA nano self-assemblies enhance the pulmonary delivery efficiency and safety of aerosolized mRNA.” Drug delivery vol. 30,1 (2023): 2219870. doi:10.1080/10717544.2023.2219870
24.Wu, Yanqi et al. “SN50 attenuates alveolar hypercoagulation and fibrinolysis inhibition in acute respiratory distress syndrome mice through inhibiting NF-κB p65 translocation.” Respiratory research vol. 21,1 130. 27 May. 2020, doi:10.1186/s12931-020-01372-6
25.Chen, Huanjie et al. “Enhanced secretion of hepatocyte growth factor in human umbilical cord mesenchymal stem cells ameliorates pulmonary fibrosis induced by bleomycin in rats.” Frontiers in pharmacology vol. 13 1070736. 6 Jan. 2023, doi:10.3389/fphar.2022.1070736